Содержание
С целью раннего выявления дифтерии и определения носителей дифтерийной палочки необходимы выделение и идентификация возбудителя, а также определение его способности к токсинообразованию. Материалом для исследования служат дифтеритические плёнки, слизь из носоглотки или отделяемое из подозрительных поражений кожных покровов.
Забор материала на дифтерию проводят двумя стерильными тампонами: один используют для посева, с другого делают мазки и окрашивают их по Граму и Найссеру. Взятый материал следует доставлять в лабораторию не позднее чем через 3 ч.
Бактериоскопия дифтерийной палочки
Окраска по Граму не является специфичной, так как дифтерийные палочки сравнительно плохо воспринимают красители, но позволяет косвенно идентифицировать непатогенные коринебактерии, располагающиеся в виде палисада (параллельно) или в виде китайских иероглифов. Окраска по Найссеру позволяет выявить характерные зёрна Бабеша-Эрнста и отличить дифтерийную палочку от ложнодифтерийной палочки С. pseudodiphtheriticum (С. hofmannii), часто обитающей в носоглотке.
Культивирование дифтерийной палочки
Бактерии дифтерии выделяют посевом на элективные среды с теллуритом (например, Клауберга II или Маклёода), ложнодифтерийная палочка (палочка Хофманна) теллур не восстанавливает (см. рис. 8 на вклейке). Для выделения чистой культуры дифтерии часть подозрительной колонии засевают на скошенный агар (или среду Ру), вторую часть — на твёрдую питательную среду для определения токсигенности и (не обжигая петли) проводят определение цистиназной активности (проба Пизу). При положительном результате наблюдают образование коричневого облачка вокруг линии укола. Чистую культуру идентифицируют на средах Хйсса, пользуясь укороченным пёстрым рядом (глюкоза, мальтоза, сахароза, мочевина), что позволяет отличить С. diphtheriae от непатоген пых коринебактерии (рис. 14-3).
Для идентификации биоваров дифтерии используют «длинный» ряд углеводов, включающий крахмал и гликоген. Для полной идентификации можно исследовать способность бактерий расти в анаэробных условиях посевом уколом в столбик 0,5% сахарного агара (растёт только С. diphtheriae).
Определение токсигенности дифтерийной палочки
Определение токсигенности дифтерийной палочки in vivo. Проводят подкожным или внутрикожным заражением 0,5-1,0 мл бактериальной культуры морских свинок массой 250 г. За 24 ч до заражения одно животное иммунизируют дифтерийным антитоксином. При положительном результате неиммунизированные животные погибают в течение 3-5 сут.
Определение токсигенности дифтерийной палочки in vitro. Способность к образованию токсина можно определять заражением куриных эмбрионов или культур клеток с регистрацией последующего цитопатнческого эффекта. Можно использовать твердофазный ИФА с использованием антитоксинов, меченных пероксидазой. Также предложены ПЦР и ДНК-зонды для обнаружения гена tox в бактериальной хромосоме. Однако наибольшее распространение получил тест иммунодиффузии Илека. На среду с пониженным содержанием Fe2+ (для более интенсивного токсинообразования) проводят посев исследуемого изолята и эталонных токсигенного и нетокси-генного штаммов параллельными штрихами. На выросшие колонии накладывают полоску фильтровальной бумаги, пропитанной дифтерийным антитоксином. Образующийся токсин и антитоксин диффундируют в агар и в месте встречи образуют линии преципитации, так называемые «усы» или стрелы. На практике используют модификацию метода. Полоску бумаги, пропитанную антитоксином (500 ME в 1 мл), наносят на чашку, а исследуемые культуры засевают бляшками по обе стороны бумажной полоски. Контролем служит заведомо токсигенная культура, также посеянная «бляшкой». В результате встречной диффузии токсина и антитоксина в месте их контакта выпадает линия преципитации, сливающаяся с линией преципитации токсигенного штамма.
Фаготипирование дифтерийной палочки
Для дифференциальной диагностики возбудителей используют набор из 9 кори нефагов. С его помощью можно типировать большинство токсигенных и нетоксигенных штаммов биовара gravis.
Одна из разновидностей РП в геле (реакция Оухтерлони) позволяет определять токсигенность дифтерийной палочки с помощью антитоксической сыворотки. В чашку Петри с питательной средой помещают полоску фильтровальной бумаги, пропитанной антитоксической противодифтерийной сывороткой и засевают исследуемыми культурами в виде штрихов, перпендикулярных к полоске бумаги. Инкубируют при 37 ПС в течение суток. При наличии токсигенной культуры в месте взаимодействия токсина с антитоксином образуются линии преципитации.
.24. Произвести учет развернутой РА в пробирках с культурой кишечной палочки при
диагностике колиэнтеритов.
Для установления серологической группы выделенных культур: а) ставят реакцию агглютинации на стекле с поливалентными ОК-сыворотками; поливалентной ОК-сывороткой в течение, для постановки реакции на стекле с каждой типовой ОК-сывороткой, входившей в состав поливалентной смеси. Контролем реакции служит взвесь микробов в капле изотонического раствора хлорида натрия. Реакция агглютинации на стекле с живой культурой имеет только ориентировочное значение, указывая на наличие в ней соответствующего К-антигена, и не может служить основанием для отнесения выделенного штамма к той или иной О-группе. 3. Для окончательной идентификации культур по О – и К-антигену ставят развернутую реакцию агглютинации в пробирках с той ОК-сывороткой, которая агглютинировала культуру на предметном стекле. Если положительная агглютинация на стекле имела место с несколькими типовыми сыворотками, развернутую агглютинацию ставят со всеми этими сыворотками. Принадлежность культуры к серологическому типу в таком случае определяют по наивысшему титру с той или иной сывороткой. При постановке развернутой реакции агглютинации готовят два ряда разведений типовой агглютинирующей ОК-сыворотки от 1:50 до титра, указанного на этикетке ампулы. Разведенную сыворотку разливают по 0,5— 1 мл. Для определения К-антигенов в каждую пробирку добавляют трехмиллиардную взвесь живой исследуемой куль- туры кишечной палочки. При определении О-антигена пользуются этой же микробной взвесью, но после предварительного кипячения ее в водяной бане в течение часа для инактивации поверхностнооболочечных антигенов и устранения таким образом феномена О-инагглютинабельности.
Последние две пробирки ряда — контрольные: контроль антигена (КА)—? исследуемая культура в изотоническом растворе хлорида натрия и контроль сыворотки (КС) —сыворотка в разведении 1 :50. Штатив с пробирками встряхивают для лучшего перемешивания сыворотки с антигеном и ставят в термостат на 20 ч. Положительный ответ дают в том случае, если выделенная культура по антигенному строению соответствует той или иной серологической группе энтеропатогенных эшерихий. При этом живая культура образует крупнохлопчатый агглю-тинат с полным просветлением жидкости над осадком не менее чем в 2—3 разведениях сыворотки; прогретая культура выпадает в виде мелкозернистого агглютината до предельного разведения той же сыворотки или до 3Д титра, указанного на этикетке’. Такого рода результат указывает на принадлежность выделенной культуры к соответствующей серологической группе энтеропатогенных кишечных палочек. Образование мелкозернистого агглютината в ряду пробирок с живой и прогретой культурой, в разведениях сыворотки до 3/i ее титра по О-антигену свидетельствует о принадлежности культуры к соответствующей О-группе и отсутствии или низком содержании в ней поверхностных соматических К-антигенов (В или L). Реакция считается положительной. Отсутствие агглютинации в пробирках с гретой культурой указывает на принадлежность выделенной культуры к другой О-группе. Если прогретая культура агглютинируется только в начальных разведениях сыворотки, это свидетельствует о ее принадлежности к другой группе, имеющей антигенное родство с соответствующей О-группой. Реакция считается отрицательной.
25.Реакция ВидаляРеакция агглютинации широко применяется в лабораторной практике для серодиагностики. Реакция агглютинации протекает в две фазы:
1 фаза – соединение антигена с антителом;
2 фаза – адсорбция на комплексе антиген+антитело физиологического раствора и выпадение осадка двух видов:
а) крупнохлопчатого – у жгутиковых бактерий (Н-агглютинация);
б) мелкозернистого – агглютинат образуется в виде компактных зерен (О-агглютинация).
Компоненты реакции Видаля:
1) испытуемая сыворотка в разведениях 1:100, 1:200, 1:400, 1:800, 1:1600;
2) диагностикумы – взвесь убитых сальмонелл трех видов: брюшного тифа, паратифа А и В;
3) физиологический раствор.
Цель реакции: определение титра антител в испытуемой сыворотке.
Реакция агглютинации должна сопровождаться контролем антигена и сыворотки. Реакция ставится в трех рядах. Учет результатов проводят через 18-20 часов.
Степень положительной реакции агглютинации обозначается плюсами: + + + + полная агглютинация + + + неполная агглютинация + + слабая агглютинация – осадка нет (отрицательная реакция) Положительным результатом у людей, не привитых против брюшного тифа, считают агглютинацию в разведении 1:100 при наличии клинической картины и не ниже 1:200 при отсутствии таковой. У привитых больных указанные титры О-антител не являются надежным диагностическим признаком. Диагностический титр Н-антител у ранее привитых больных должен быть не менее 1:400.
26. Реакция Видаля (с культурой дизентерийных палочек) считается доказательной в разведении 1 : 100 для дизентерии типа Зонне и 1 : 200 для остальных типов, наибольшую диагностическую ценность имеет нарастание титра при повторных исследованиях,
При положительной реакции осадок равномерным слоем покрывает дно пробирки. Края его обычно неровные (так называемый зонтик). Надосадочная жидкость просветляется. После легкого встряхивания пробирки в прозрачной надосадочной жидкости всплывают отдельные хлопья агглютината. Последнее разведение сыворотки, в котором наблюдают хорошо выраженную агглютинацию, считают ее титром. При отрицательной реакции взвесь сохраняет исходную мутность, так же как в контроле диагностикума. При избытке антигена он может осесть на дно в виде плотного комка.
27.Учет результатов РПГА при гриппе. резул-ты р-ции учитыв. По наличию геммаглютинации-рыхлого осадка из склеившихся эритроцитов на дне и боковых поверхностях лунок(«зонтик»).в контролях геммаглют. Не должно быть(появление плотного осадка эритр. В виде пуговки или колечка)
В ряде лунок А-Н наход. 2-х кратные разведения (от 1/2 до 1/1024) 8-ми испытуемых сывороток(в предпоследней положит сывор.,в последней – отриц.)в ряде В и F –р-ция отриц.,в ряде А и Н-РНГА положит. в титре 1/32, С и G- 1/16, D- 1/128,некоторые сыворотки (С и G)дают эффект прозоны.
28. Учет результатов РПГА с эритр диагностикумами. С целью диагностики дизентерии сыворотки титруют с эритроцитарными диагностикумами Флекснера (из S. flexneri 1 – 5), Зонне (из S. sonnei), Минимальным условно диагностическим титром к диагностикуму Флекснера для взрослых считают положительный результат реакции в разведении 1:400, для детей до 3 лет – 1:100, старше 3 лет – 1:200; для остальных диагностикумов – 1:200. В связи с большим числом неспецифических положительных результатов этой реакции, в особенности в отношении диагностикумов Флекснера и Зонне, достоверным положительным результатом следует считать не менее чем четырехкратное нарастание титра в динамике заболевания, а также наличие титра цистеинустойчивых антител 1:80 и выше.
29. Реакция Райта: ставят в начале 2-й недели болезни. Реакцию ставят не менее чем в пяти разведениях (1:50, 1:100, 1:200, 1:400 и 1:800) в объеме 1 мл каждое. В качестве антигена применяют единый бруцеллезный дианостикум. Перед употреблением диагностикум разводят в 10 раз карболизированным (0,5%) физиологическим раствором. Учет реакции производят через 24 часа путем сравнения степени просветления в опытных пробирках с соответствующим стандартом мутности, который готовят следующим образом. В 4 пробирки последовательно наливают 1, 2, 3 и 4 мл разведенного диагностикума, затем в том же порядке добавляют 3, 2 и 1 мл карболизированного физиологического раствора, в последнюю пробирку ничего не добавляют. После взбалтывания содержимого берут по 0,5 мл антигена каждой концентрации и 0,5 мл карболизированного физиологического раствора. Таким образом получают 4 пробирки стандарта мутности с различной степенью просветления (75% — 3—, 50% — 2 — и 25% — 1 — и отсутствие просветления), которые вместе с опытными пробирками помещают в термостат при t° 37° на 24 часа, после чего производят учет реакции. Диагностическим титром исследуемой сыворотки считается 50% агглютинации (2+).
30. Факторы патогенности стафилококков
1. Выявление плазмокоагулазы: выделенную агаровую культуру в виде густой взвези вносят в пробирку с цитратной плазмой кролика и эмульгируют. Пробирки выдерживают в вертикальном положении при 37 гр. и наблюдают за появлением коагуляции- свертывания крови. (+ результат отмечается через 2-6 ч.)
2. Определение ДНКазной активности: культуры стафилококков засевают бляшками в чашку Петри с ДНК-содержащим агаром. Через сутки в чашку вносят соляную кислоту и через 3-5 мин. Наблюдают появление вокруг бляшек зоны просветления, что свидетельствует о наличии ДНКазы.
3. Лизоцимная активность: при выделении лизоцима вокруг колонии стафилококков образуются зоны лизиса микрококка.
4. Выявление продукции энтеротоксина: культуру стафилококков засевают в специальную питательную среду. Инкубация 37 гр. 3-4 суток. Затем фильтруют через мембранные фильтры. Полученный фильтрат смешивают с молоком скармливают котятам. При наличии энтеротоксина через 1 ч. У котят возникает рвота, а через 2-3 ч. Понос, возможен летальный исход.
ЦПД в культуре тканей
Исследуемый материал: испражнения, носоглоточный смывы. Заражают культуру клеток почек обезьян. В культуре вирус оказывает ЦПД. Идентифицируют вирус, проводя РН с типоспецифическими сыворотками и ИФА.
РН. Компоненты: вируссодержащий. материал и диагностическая сыворотка. Готовят разведения сывороток, добавляют вирусод. материал, заражают смесью культуру клеток. Пол. результат: отсутствие ЦПД вируса, бляшкообразования и изменения цвета.
ИФА: Компоненты: специфические АТ, вируссод. материал, АТ той же специфичности, конъюгат, хромогенный субстрат. Связывают специфические АТ с пластиком лунки планшета, вносят вируссод. материал, вносят АТ той же специфичности, конъюгат и субстрат. Пол. результат: изменение окраски субстрата.
32.Учут результатов ИФА Используют в качестве метки АТ ферментов, способных разлагать субстрат и приводить к образованию окрашенных продуктов( хромогена). Соединенные с ферментом АТ соединяются с гомологичными АГ. Сначала на твердой фазе адсорбируются АГ или АТ , а потом все компонентты реакции. Интенсивность окраски хромогена соответствует количеству образовавшихся комплексов АГ +АТ + фермент. АГ улавливается АТ, присоединенным к твердой фазе( пластиковые планшеты, пленки) . В результате инкубации исследуемый АГ присоединяется к АТ и твердой фазе. Затем привязанный АГ выявляют с помощью меченых ферментом АТ против этого АГ-прямой вариант.При непрямом методе используются меченые ферментом антивидовые сыворотки. Количество присоединенного к твердой фазе фермента соответствует количеству АГ. Активность фермента оценивают по интенсивности окрашивания хромогена визуально или с помощью фотоэлектроколориметра.
33. Произвести учет РГА с целью определения титра вируса.Для постановки РГА готовят двукратные разведения вакцинного вируса от 1:2 до 1:4096. С этой целью во все лунки одного ряда полистероловой микропанели микротитратором разливают физиологи ческий раствор (0,05 или О,25 см3), в первую вносят в равном объеме вакцинный вирус трехкратно пипетируюти и переносят 0,05 или0,025 см3 во вторую лунку и т.д. Из последней лунки 0,05 или0,025 см3 удаляюти обезвреживают в 2%-ном растворе едкого натрия. После разведения вируса во все лунки вносят 0,7%-ную суспензию эритроцитов петуха в объеме, равном исходному объему физиологического раствора. Микропанели аккуратно встряхивают и оставляют при команатной температуре (18-20*С). Учет реакции проводят после оседания эритроцитов в контроле.
Для контроля эритроцитов на спонтанную гемагглютинацию оп ределения времени учета реакции в две лунки с физиологическим растворам (0,05 или 0,025 см3) добавляют равный объем эритроцитов. РГА оценивают положительно при оcедании эритроцитов в виде хорошо выраженного "зонтика", отрицательно – в виде "пуговки". За титр вируса принимают его наибольшее разведение, дающее четко выраженную агглютинацию в виде "зонтика". Получение нечетких ре зультатов может быть связано с изменившимся рН физиологического раствора.
34.Учет РТГА Берем 6 пробирок. последняя – контрольная ( контроль эритроцитов). В каждую добавляем ИХН. Затем в каждую добавляем АГ. ( диагностикум) ( кроме шестой) . Затем в первую добавляем сыворотку от больного и титруем. Потом на 30 мин. в термостат . Затем добавим во все эритроциты ( одинаковое количество) . Потом – 30 мин. термостат. Положительный результат – пуговка. Отрицательный – зонтик.
35учет ИФА. По ходу, так же , как и 32, но неточно.
Механическое удерживание земляных масс: Механическое удерживание земляных масс на склоне обеспечивают контрфорсными сооружениями различных конструкций.
Реакция Райта
Развернутая РА для определении АТ при бруцеллезе
1. Сыворотка, разведенная в физрастворе двукратно (АТ)
2. Единый бруцеллезный диагностикум (АГ) (голубой, единственный подкрашенный)
Инкубация – 20 ч.
Механизм: при наличии АТ образуются хлопья агглютинации, оседающие на дно.
Титр АТ – наибольшее разведение, при котором еще есть агглютинация.
Реакция Манчини
Реакция преципитации в геле для определения уровня Ig – метод радиальной иммунодиффузии
Образцы исследуемых сывороток помещают в лунки агарового геля, который содержит АТ против IgG, IgM или IgA в известной концентрации. Диффундирующие в агар Ig образуют кольца преципитации с антиглобулиновыми антителами, размер которых зависит от содержания в сыворотке Ig соответствующего класса. . По разведениям стандартной сыворотки строится калибровочная кривая, по которой определяется уровень Ig в исслед.сыворотке. Уровень сывороточных Ig отражает функциональное состояние B-системы организма.
Постановка ориентировочной РА для определения неизвестного микроба
Компоненты: 1. Взвесь неизвестной культуры в физ.р-ре (АГ в электролите)
2. Диагностические аггл. сыворотки (АТ): н-р, 1) поливалентная эшерихиозная 2) типовые О-26, О-55, О-111.
Механизм: при соответствии антигена антителу – хлопья агглютинации.
Окраска по Граму (чистая культура)
Позволяет выявить особенности строения КС бактерий
Стекло обезжирить мылом. Капля 0,9% NaCl. Культуру бакпетлей в каплю. Сушим. Фиксируем (3 раза провести над пламенем горелки). Генцианвиолет (бумажки по Синеву) смочить водой 1-2 мин. Р-р Люголя – 1-2 мин. Стряхиваем и краситель, и Люголь. Этиловый спирт – 30-60 с, до прекращения отхождения фиолетовых струек красителя (опустить 3 раза). Промывание водой. Фуксин Пфейффера – 3-5 мин. промыть водой. Грам(+) не обесцвечиваются спиртом и сохраняют окраску певрого красителя (многослойный пептидогликан КС взаимодействует с краской и задерживает её в комплексе с йодом), грам(-) обеспечиваются спиртом и окрашиваются вторым красителем.
Окраска по Гинса-Бури
Позволяет выявить капсулу бактерий (называется негативным, так как капсула не прокрашивается)
В каплю черной туши внести культуру, смешать и 2 стеклом со шлифованным краем приготовить мазок, как из крови. Высушить. Зафиксировать на воздухе. Фуксин Пфейффера – 1-2 мин. Капсула не воспринимает красители, поэтому окрашиваем бактерии и окружающий фон. Фон окрашивается тушью в черный цвет, а возбудитель фуксином в розовый цвет, при этом капсула видна в виде светлого ободка вокруг бактерий.
Окраска по Ожешко
Позволяет окрасить споры бактерий.
На нефиусированный мазок 0,5% HCl – 3 мин с прогреванием (протрава). промывание водой (осторожно). Фиксация в пламени спиртовки. Окраска по Цилю-Нильсену. Спора, как кислотоустойчивая структура красится в красный цвет, а цитоплазма клетки, как кислотонеустойчивая структура – в синий цвет.
Окраска по Цилю-Нильсену
Позволяет определить кислотоустойчивые бактерии.
Карболвый фуксин Циля 3-5 мин. Промывание водой. 5% H2SO4 1-2 мин (для обесцвечивания). промывание водой. Метиленовая синь 3-5 мин. Промывание водой. Кислотоустойчивые бактерии не обесцвечиваются после первого красителя, так как содержат больше липидов, воска, окислителей, поэтому окрашиваются в красный цвет. Кислотонеустойичвые бактерии и структуры обесцвечиваются после первого красителя, поэтому красятся в голубой цвет.
Тельца Бабеша-Негри
Цитоплазматические включения в нейронах (срезы аммонова рога и мозжечка), клетках слюнных желез при бешенстве – индикация вируса. Красные на голубом фоне.
Среда Эндо (диф.-диагн.) (МПА + 1% лактоза + осн.фуксин, обесцвеч. тиосульфитом натрия), Lac(+) – темно-красные колонии с металлич.блеском; для выявления энтеробактерий (сахаролитические свойства).
Среда Левина(диф.-диагн.) (МПА + 1% лактоза + метилен.синь и эозин), Lac (+) – насыщ. синего цвета; для выявления энтеробактерий (сахаролитические свойства).
Среда Плоскирева (диф.-электив.) (МПА + 1% лактоза + нейтр.красный + соли желч.к-т + бриллиант.зелен.) (для шигелл и сальмонелл); Lac (+) – красные.
Среда Раппопорта (желтая) (электив.-диф. для сальмонелл и шигелл) (МПБ + 1% желчь (электив.ф-р) + глю(диф.ф-р) + инд-р Андреде(кислый фуксин + NaOH): S.typhi –до кислоты (красный), S.paratyphi A,B – до кислоты и газа. Разливается в бутылки и колбы, т.к. в начале болезни сальмонеллы находятся в крови. Берут 5 мл крови и разбавляют в 10 раз (до 50 мл).
ЩПВ – щелочно-пептонная вода (селектив) (1% пептонная вода + 0,5% NaCl + KNO3 + Nа2CO3; pH = 9,0). Щелочь – селективный фактер для холерного вибриона.
Сахарный бульон (универсальная) (триптоза + мясной экстракт + глю + NaCl )
КА (диф-диаг) (агар+эритроцитарная масса). Для определения гемолизирующих свойств бактерий. Гемолиз: α – Hb превращается в гемосидерин (зеленый), β – просветы вокруг колоний, γ – отсутствие гемолиза.
ЖСА (элективн)(МПА + желточная взвесь + 10% NaCl). Для выявления фермента патогенности лецитовиттелазы (лецитиназы). (+) помутнение вокруг колоний.
МПБ (универсальная)(мясная вода + пептон + 0,5% NaCl).
Китта-Тароцци (для анаэробов) (сахарный бульон + кусочки паренхиматозных органов (для адсорбции О2) + высокий столбик + слой вазелинового масла (для изоляции от атмосферного воздуха). Перед посевом среду прогревают на кипящей водяной бане в теч 10-15 мин для удаления воздуха
Вильсона-Блера (железосульфитный агар) (3% МПА + 1% глю + 20% сульфит натрия + 8% FeCl3) Разливают высоким столбиком, сверху – вазелиновое масло (для изоляции от атмосферного воздуха). Позволяет выявить сероводородную активность. Анаэробы образуют колонии черного цвета за счет восстановления сульфита натрия, который, соединяясь с FeCl3 дает осадок сульфата железа черного цвета.
Игла –синтетическая (13 АМК, 7 витаминов, на основе сбалансированного солевого раствора Эрла). Питательный раствор для культур клеток, используемых для культивирования вирусов.
199 – синтетическая(20 АМК, 17 витаминов, глюкоза, минеральные соли, пурины и пиримидины – всего 199 компонентов, на основе сбалансированного солевого р-ра Хенкса). Питательный раствор для культур клеток, используемых для культивирования вирусов.
· хроническая гонорея – кровь / серологическое
· острая гонорея – гной / бактериоскопическое, бактериологическое
· дизентерия – испражнения / бактериологическое
· холера – испражнения / бактериологическое
· брюшной тиф – кровь, испражнения / бактериологическое, серологическое
· коклюш – отделения из носоглотки / бактериологическое
· дифтерия – пленки / бактериологическое
· сибирская язва – содержимое карбункулов / бактериологическое
· корь – кровь / серологическое
· полиомиелит – кровь, ликвор / серологическое
Определение токсигенности дифтерийной палочки реакцией преципитации в геле
В чашку Петри с питат.агаром кладут полоску фильтровальной бумаги, пропитанную антитоксической противодифтерийной сывороткой. Засевают исследуемые культуры, в качестве контроля используют заведомо токсигенную культуру. При размножении токисгенной культуры в месте соединения токсина с антитоксином в плотной питательной среде образуется преципитат в виде белых линий – «усов».
| | | следующая лекция ==> | |
| СВЕДЕНИЯ О РАБОТЕ, ВЫПОЛНЕННОЙ ВО ВРЕМЯ ПРАКТИКИ | | | Проект въездной группы в г.Тверь. |
Дата добавления: 2017-02-25 ; просмотров: 1720 | Нарушение авторских прав