1. 70%-ый спирт, предметные стекла, обезжиренные смесью Никифорова, бланки направлений, ручка, стеклограф, спички, круглая резинка, конверт из крафт-бумаги, лоток для сброса, емкость с дезинфицирующим раствором;
2. Стерильные: лоток, индивидуальные перья-копья, пинцет, ватные шарики.
II. Ход манипуляции:
1. Установить доверительные отношения с пациентом;
2. Объяснить цель и ход процедуры;
3. Вымыть и просушить руки;
4. Надеть маску, перчатки;
5. Обработать кожу 4-го пальца руки спиртом;
6. Проколоть мякоть последней фаланги 4-го пальца индивидуальным пером-копьем;
7. Поместить перо в лоток для сброса;
8. Снять первую каплю крови сухим ватным шариком;
9. Поместить шарик в емкость с дезинфицирующим раствором;
10. Повернуть палец проколом вниз;
11. Прикоснуться предметным стеклом ко второй капле крови;
12. Приложить ватный шарик к месту прокола;
13. Размазать каплю крови на предметном стекле в диск диаметром 10-15 мм углом второго предметного стекла;
14. Обвести толстую каплю крови стеклографом с обратной стороны стекла;
15. Указать регистрационный номер с обратной стороны стекла;
16. Высушить препарат на воздухе в горизонтальном положении, предохраняя от пыли и мух;
17. Поместить толстую каплю между двумя предметными стеклами, используя спичку и круглую резинку;
18. Оформить направление в паразитологическую лабораторию;
19. Поместить препарат в конверт;
20. Отправить конверт в лабораторию сразу же;
21. Провести дезинфекцию лотка, пинцета, шариков, пера-копья;
22. Снять маску, перчатки;
23. Вымыть и просушить руки.
1. Взятие крови проводится немедленно при подозрении на заболевание;
2. При взятии крови строго соблюдать правила асептики;
3. Нельзя пользоваться иглами Франка и иглами от шприца;
4. Предметное стекло держать пальцами за края, чтобы не оставить отпечатков;
5. После высыхания капли через нее должен слабо просвечиваться крупный печатный текст, а при микроскопии должно насчитываться в среднем 10-15 ядер лейкоцитов;
6. На одном стекле можно приготовить 2 толстые капли с двух краев стекла;
7. Кровь лучше брать во время лихорадочного периода и в межприступный период.
Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:
Лучшие изречения: При сдаче лабораторной работы, студент делает вид, что все знает; преподаватель делает вид, что верит ему. 9310 – 
| 7287 – 
или читать все.
78.85.4.207 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.
Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)
очень нужно
Показания:диагностика малярии, менингококковой инфекции.
Оснащение:
Предметные стекла, обезжиренные смесью Никифорова, 70% спирт, стерильные индивидуальные перья-копья, пинцет, ватные шарики, лоток для отработанного материала.
При исследовании крови на малярийные плазмодии готовят обычно 10 тонких мазков крови и 5 «толстых капель» крови.
Техника взятия крови и приготовление тонкого мазка:
– установить доверительные отношения с пациентом;
– объяснить цель и ход процедуры;
– вымыть и просушить руки;
– надеть перчатки, маску;
– обработать спиртом нижнюю фалангу 4 пальца руки;
– проколоть мякоть нижней фаланги 4 пальца индивидуальным пером-копьем;
– поместить перо в лоток для отработанного материала;
– первую каплю крови снять сухим ватным шариком;
– повернуть палец проколом вниз;
– прикоснуться предметным стеклом ко второй капле крови (или нанести каплю крови с помощью капилляра Панченкова);
– поставить шлифовальное стекло перед каплей крови под углом 45 градусов;
– продвинуть шлифовальное стекло до соприкосновения с каплей крови;
– когда кровь равномерно распределится между обоими стеклами, сделать мазок быстрым движением шлифовального стекла;
– приготовленный мазок высушить на воздухе в горизонтальном положении;
– затем мазок фиксируют и окрашивают по Романовскому.
Техника приготовления «толстой капли» крови.
– приготовить тонкий мазок крови;
– на свежий мазок крови до того, как он высохнет нанести одну, две капли крови (дать им упасть);
Кровь растекается в правильный диск. При этом форменные элементы и паразиты не травмируются.
– высушить препараты на воздухе при комнатной температуре в горизонтальном положении в течение 3-4 часов;
– оформить направление в паразитологическую лабораторию;
– провести дезинфекцию лотка, пера-копья, пинцета, ватных шариков;
– снять маску, перчатки;
– вымыть и просушить руки;
– приготовленные «толстые капли крови» выщелачивают дистиллированной водой и окрашивают как мазки (не фиксируя).
Примечание:
– при взятии крови строго соблюдать правила асептики;
– предметные стекла держать пальцами за края, чтобы не оставить отпечатков;
– после высыхания капли через нее должен слабо просвечиваться крупный печатный текст;
– на одном предметном стекле можно приготовить 2 «толстые капли», кровь для исследования лучше брать во время лихорадочного периода и в межприступный период.
ПРОДЕМОНСТРИРУЙТЕ ТЕХНИКУ ВВЕДЕНИЯ 500 000 ЕД НАТРИЕВОЙ СОЛИ БЕНЗИЛПЕНИЦИЛЛИНА ВНУТРИМЫШЕЧНО
Показание: этиотропная терапия многих инфекционных заболеваний.
Инструкция 2 курса – внутримышечная инъекция
ПРАВИЛА РАБОТЫ В БОКСЕ.
Бокс предназначен для приема, осмотра, обследования, оказания необходимой лечебной помощи, проведения консультации инфекционным больным.
Для предотвращения ВБИ при работе в боксе необходимо строго выполнять все правила санэпидрежима и придерживаться принципа поточно-пропускной системы. Этому способствует устройство бокса и его оснащение.
Бокс имеет два предбокса, смотровую бокса, санитарный узел. Один предбокс предназначен для медперсонала. Вход в него находится со стороны коридора приемного отделения. В этом предбоксе имеется кран с раковиной, мыло, дезинфектант для рук, 3 полотенца, 3 халата (для врача, медсестры и санитарки), бак для дезинфекции, тумбочка, на которой находятся две емкости для ветоши (чистой и отработанной), внутри тумбочки – флакон с дезинфектантом. Второй предбокс предназначен для входа и выхода больного со стороны территории больницы. Смотровая бокса приемного отделения снабжена всем необходимым для приема и осмотра больного: рожковая вешалка для верхней одежды пациента и сопровождающих его лиц, весы, ростомер, кушетка, стол (или пеленальный столик), стул, емкости для чистых шпателей, градусников и для их дезинфекции. Вся мебель должна быть деревянной, пластмассовой или с кожаной обивкой. Стены покрашены масляной краской. Каждый бокс снабжен уборочным инвентарем, предназначенным для использования только в данном боксе, имеет четкую маркировку.
В боксах предназначенных для лечения больных имеется санитарная комната, и окно для подачи пищи и лекарств.
В боксе должен приниматься только один больной, несмотря на сходство предварительных диагнозов во избежание последствий возможной ошибки в диагнозе и перекрестного заражения.
Перед входом в предбокс медперсонал надевает маску, плотно закрывает дверь в коридор (во избежание прямого потока воздуха между боксом и коридором), моет руки, просушивает их, надевает на халат второй халат, шапочку для работы именно в этом боксе, заходит в смотровую бокса, плотно закрывает дверь. Осмотрев больного, выходит в служебный предбокс, плотно закрывает дверь, снимает второй халат, шапочку, моет руки, дезинфицирует, просушивает их, выходит из предбокса, плотно закрывает дверь.
Каждый инфекционный больной осматривается на педикулез и заразные кожные заболевания. На него заполняется медицинская статистическая документация, а также карта экстренного извещения (ф. 058/у).
Осмотренный больной в сопровождении курьера направляется для лечения в отделение, соответствующее профилю его заболевания, выходя через тот предбокс через который входил.
После осмотра каждого инфекционного больного обязательно производится заключительная дезинфекция с кварцеванием и проветриванием (с учетом механизма передачи инфекции).
Организация стока поверхностных вод: Наибольшее количество влаги на земном шаре испаряется с поверхности морей и океанов (88‰).
Папиллярные узоры пальцев рук – маркер спортивных способностей: дерматоглифические признаки формируются на 3-5 месяце беременности, не изменяются в течение жизни.
Общие условия выбора системы дренажа: Система дренажа выбирается в зависимости от характера защищаемого.
ТОЛСТАЯ КАПЛЯ — метод обнаружения паразитов крови, а также выявления морфологических элементов крови. Предложен Р. Россом в 1903 г. для выявления возбудителей малярии (см.).
Метод толстой капли используется для выявления спирохет (см.), трипаносом (см.), микрофилярий (см. Филяриатозы). Он нашел широкое применение в мед. практике, т. к. позволяет за одно и то же время исследовать в 30—50 раз большее количество крови на наличие паразитов, чем в тонком мазке. Это обусловлено тем, что при использовании этого метода кровь не фиксируется и во время окраски происходит гемолиз эритроцитов, к-рые становятся прозрачными, а паразиты, находящиеся в них, после окраски хорошо видимыми. С помощью этого метода может быть подсчитано число паразитов на определенное количество лейкоцитов. Ввиду неравномерного распределения паразитов и лейкоцитов в различных участках приготовленного по этому методу препарата подсчет следует производить в центральных и периферических его участках и выводить среднее значение.
При постановке метода возможно выявление полихроматофилов (см. Полихромазия), эозинофилов, базофилов, эндотелия (при затяжном септическом эндокардите и сепсисе), метгемоглобиновых телец (телец Гейнца — Эрлиха).
Приготовление препарата по методу толстой капли: на предметное стекло наносят 2—3 капли крови, к-рые распределяют с помощью иглы или угла предметного стекла до величины пятнадцатикопеечной монеты. Другой метод приготовления препарата был предложен в 1925 г. Гуппенбауэром (Huppenbauer): на предметном стекле делают мазок крови и, пока он влажный, наносят на него каплю крови, к-рая равномерно растекается, образуя правильный круг. Преимущества этого метода — равномерность капли,исключение механического повреждения элементов крови при ее размазывании; в мазке сохраняется строма эритроцитов, что позволяет изучать форму н величину пораженных эритроцитов; капля не трескается, хорошо пристает к стеклу.
Капли крови на стекле высушивают на воздухе или в термостате и, не фиксируя, окрашивают, чаще по Романовскому (см. Романовского— Гимзы метод) при pH 7,2—7,3. Препарат рекомендуется окрашивать не позже чем через 2—3 сут. после приготовления. В препаратах, длительно сохранявшихся, особенно в условиях сухого жаркого климата, паразиты окрашиваются хуже, эритроциты плохо лизируются. На такие препараты с целью обеспечения гемолиза рекомендуется до окраски наливать на 3—5 мин. дистиллированную воду, к-рую затем заменяют красящим р-ром.
Рекомендованы методы ускоренной окраски препаратов метиленовой синькой и эозином. Препарат, приготовленный по методу толстой капли, может быть также окрашен (после гемолизирования) щелочной синькой Мансона, а также по методу И. Г. Иоффе метиленовой синькой с фуксином ii другими методами.
Библиогр.: Лабораторные методы исследования патогенных простейших, под ред. Д. Н. Засухина, с. 165, М., 1957; Справочник по клиническим лабораторным методам исследования, под ред. Е. А. Кост, М., 1975; Field J. W. The microscopic diagnosis of human malaria, v. 1—2, Kuala Lumpur, 1948—1956.